脂質(zhì)過(guò)氧化物（lipid peroxidation，LPO）含量試劑盒說(shuō)明書(shū)

脂質(zhì)過(guò)氧化物（lipid peroxidation，LPO）含量試劑盒說(shuō)明書(shū)

微量法 100 管/96 樣

注　意：正式測定前務(wù)必取 2-3 個(gè)預期差異較大的樣本做預測定

測定意義：

脂質(zhì)過(guò)氧化是動(dòng)植物體內活性氧(ROS)氧化生物膜的過(guò)程，脂質(zhì)過(guò)氧化物（LPO）是脂質(zhì)過(guò)氧化過(guò)程的產(chǎn)物，即 ROS 與生物膜的磷脂、酶和膜受體相關(guān)的多不飽和脂肪酸的側鏈及核酸等大分子物質(zhì)起脂質(zhì)過(guò)氧化反應形成 LPO，使細胞膜的流動(dòng)性和通透性發(fā)生改變,最終導致細胞結構和功能的改變。因此，LPO 常被作為機體氧化應激的一種指標，與某些疾病的病理過(guò)程，如腫瘤、化學(xué)中毒、感染、炎 癥、自身免疫疾病、動(dòng)脈粥樣硬化（AS）及心腦血管疾病，以及衰老等生理過(guò)程密切相關(guān)。

測定原理：

LPO 在酸性條件下加熱，產(chǎn)生小分子終產(chǎn)物 MDA，MDA 與硫代巴bi妥酸(thiobarbituric acid，TBA)縮合，生成紅色產(chǎn)物，在 535nm 有最大吸收峰。

需自備的儀器和用品：

酶標儀、水浴鍋、臺式離心機、可調式移液器、96 孔板、研缽、冰和蒸餾水。

試劑的組成和配置：

提取液：液體 100mL×1 瓶，4℃保存；

試劑一：液體 35mL×1 瓶，4℃保存；

試劑二：液體 12mL×1 瓶，4℃保存。

注意事項：

臨用前注意試劑二是否wan全溶解，如未溶解，可以 70℃-90℃加熱，并振蕩以促進(jìn)溶解。

LPO 提?。?/span>

1、細菌、細胞或組織樣品的制備：

細菌或培養細胞：先收集細菌或細胞到離心管內，離心后棄上清；按照細菌或細胞數量（10⁴ 個(gè)）：提取液體積（mL）為 500~1000：1 的比例（建議 500 萬(wàn)細菌或細胞加入 1mL 提取液），超聲波破碎細菌或細胞（冰浴，功率 20％或 200W，超聲 3s，間隔 10s，重復 30 次）；8000g 4℃離心 10min，取上清，置冰上待測。

組織：按照組織質(zhì)量（g）：提取液體積(mL)為 1：5~10 的比例（建議稱(chēng)取約 0.1g 組織，加入 1mL 提取液），進(jìn)行冰浴勻漿。8000g 4℃離心 10min，取上清，置冰上待測。

2、血清（漿）樣品：直接檢測。

測定步驟：

1、酶標儀預熱 30min 以上，調節波長(cháng)到 535 nm。

2、在 EP 管中依次加入如下試劑

立即混勻，95℃水浴 40min 后，流水冷卻。3000g 離心 10min，吸取 200µL 上清加入 96 孔板，測定 535nm 下各管吸光值，記作 A 測定和 A 空白。ΔA=A 測定-A 空白。

　　LPO 含量計算：

用 96 孔板測定的計算公式如下

y = 0.5723x - 0.0076，R² = 0.9997，x 為標準品濃度 μmol/mL，y 為吸光度。

1、血清（漿）中 LPO 含量的計算：

LPO 含量(nmol/ mL)=（ΔA+0.0076）÷0.5723×V 標÷V 樣×1000 =1747.3×（ΔA+0.0076）

2、細菌、細胞或動(dòng)物組織中 LPO 含量計算

（1）按照蛋白濃度計算

LPO 含量(nmol/ mg prot)=（ΔA+0.0076）÷0.5723×V 標÷(Cpr×V 樣)×1000 =1747.3×（ΔA+0.0076）÷Cpr

需要另外測定，建議使用本公司 BCA 蛋白質(zhì)含量測定試劑盒。

（2）按照樣品質(zhì)量計算

LPO 含量(nmol/g 鮮重)=（ΔA+0.0076）÷0.5723×V 標÷(W ×V 樣÷V 樣總)×1000 =1747.3×（ΔA+0.0076）÷W

(3 ) 按照細菌或細胞密度計算：

LPO 含量(nmol/10⁴)=（ΔA+0.0076）÷0.5723×V 標÷(500×V 樣÷V 樣總)×1000

=3.495×（ΔA+0.0076）

V 標：標準曲線(xiàn)中加入標品體積，0.03mL；V 樣：加入樣本體積，0.03 mL；V 樣總：加入提取液體積，1 mL；Cpr：樣本蛋白質(zhì)濃度，mg/mL；W：樣本質(zhì)量，g；500：細胞或細菌總數，500 萬(wàn)；1000，μmol 到 nmol 換算系數。